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临床样品生产PCR反应条件温度与时间设置详述

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ningxueqin 发表于 2023-11-09 23:57:38 | 显示全部楼层 |阅读模式
  临床样品生产PCR反应条件三要素为温度、时间和循环次数。
0 z/ t" n) p/ u6 o* Z  温度与时间的设置 基于PCR原理三步骤而设置变性-退火-延伸三个温度点。在标准反应中采用三温度点法,双链DNA在90~95℃变性,再迅速冷却至40 ~60℃,引物退火并结合到靶序列上,然后快速升温至70~75℃,在Taq DNA 聚合酶的作用下,使引物链沿模板延伸。对于较短靶基因(长度为100~300bp时)可采用二温度点法,除变性温度外、退火与延伸温度可合二为一,一般采用94℃变性,65℃左右退火与延伸(此温度Taq DNA酶仍有较高的催化活性)。
7 \2 I* p) j& O" l  1、变性温度与时间:
% a6 ?1 V4 v& A  j! z  l$ M+ K3 @  `9 n  变性温度低,解链不完全是导致PCR 失败的最主要原因。一般情况下,93℃~94℃lmin足以使模板DNA变性,若低于93℃则需延长时间,但温度不能过高,因为高温环境对酶的活性有影响。此步若不能使靶基因模板或PCR产物完全变性,就会导致PCR失败。
; Z* d# f2 r$ t3 ]4 f# z: N8 e: E  2、退火(复性)温度与时间:- X7 g% T$ ]8 ^! _# n
  退火温度是影响PCR特异性的较重要因素。变性后温度快速冷却至40℃~60℃,可使引物和模板发生结合。由于模板DNA 比引物复杂得多,引物和模板之间的碰撞结合机会远远高于模板互补链之间的碰撞。退火温度与时间,取决于引物的长度、碱基组成及其浓度,还有靶基序列的长度。对于20个核苷酸,G+C含量约50%的引物,55℃为选择最适退火温度的起点较为理想。引物的复性温度可通过以下公式帮助选择合适的温度:
( X9 v, [$ s9 l; L; N- ~  Tm值(解链温度)=4(G+C)+2(A+T)
; b8 a; u" M1 Y1 J4 u5 a  复性温度=Tm值-(5~10℃)
# J' m; D3 m& E  p  在Tm值允许范围内, 选择较高的复性温度可大大减少引物和模板间的非特异性结合,提高PCR反应的特异性。复性时间一般为30~60sec,足以使引物与模板之间完全结合。
0 `0 X' V  Y3 n# A9 t6 n2 {5 s$ E  3、延伸温度与时间:
6 Z: F: U9 p3 ~0 A% x; s  Taq DNA聚合酶的生物学活性:
5 O6 R  Q5 D& y9 j1 d+ h  70~80℃ 150核苷酸/S/酶分子& l* Y2 C) H/ d. c1 a
  70℃ 60核苷酸/S/酶分子
) J6 h7 {/ h( R: r  55℃ 24核苷酸/S/酶分子
& G+ ]1 {; `3 O! J* g! N  w) B  高于90℃时, DNA合成几乎不能进行。/ p8 y" Q, R" {
  PCR反应的延伸温度一般选择在70~75℃之间,常用温度为72℃,过高的延伸温度不利于引物和模板的结合。 PCR延伸反应的时间,可根据待扩增片段的长度而定,一般1Kb以内的DNA片段,延伸时间1min是足够的。3~4kb的靶序列需3~4min;扩增 10Kb需延伸至15min。延伸进间过长会导致非特异性扩增带的出现。对低浓度模板的扩增,延伸时间要稍长些。0 h6 w  ^) q7 h' J
  循环次数决定PCR扩增程度。PCR循环次数主要取决于模板DNA的浓度。一般的循环次数选在30~40次之间,循环次数越多,非特异性产物的量亦随之增多。
% e( S0 L$ Y0 L: h- U3 q- _
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